Главная » Врачам » Инструкция по забору материала
Инструкция по забору материала

Уважаемые коллеги!

Для максимального исключения в дальнейшем возможных ошибок на преаналитическом этапе лабораторного анализа, просим Вас ознакомиться с «Инструкцией по забору материала для лабораторных исследований» и в дальнейшем придерживаться изложенных правил.

Просим соблюдать их для получения более достоверных результатов!

1. Если вы используете вакуумные системы для взятия крови то вам необходимо взять иглу и снять защитный колпачок со стороны, закрытой резиновой мембраной

2. Вставить иглу в держатель и завинтить до упора. Подготовить все необходимые пробирки.

3. Снять защитный колпачек с иглы . Не прокалывая резиновую заглушку в крышке пробирки, ввести иглу в вену , как это делается при обычной процедуре взятия крови шприцем.

В этот момент кровь не проходит по игле, так как второй ее конец закрыт резиновой мембраной

4. Вставить пробирку в держатель до упора. При этом игла прокалывает резиновую мембрану и резиновую пробку в крышке пробирки - образуется канал между пробиркой с вакуумом и полостью вены. Кровь проходит в пробирку до тех пор, пока не компенсируется созданный в пробирке вакуум Если используете жгут - снимите его, как только кровь начнет поступать в пробирку.

5. После прекращения тока крови извлечь пробирку из держателя. Резиновая мембрана возвращается в исходное положение, перекрывая ток крови по игле. При необходимости в держатель вставляется ряд других пробирок для получения нужного объема крови для различных исследований. Повторно вводить иглу для этого не нужно.

6. При использовании пробирок с добавками необходимо аккуратно перевернуть пробирку 8-10 раз для полного смешения крови с реагентами или активатором образования сгустка. После того как последняя пробирка заполнилась, вынуть держатель с иглой из вены.

Если вы используете шприц для взятия крови то после заполнения шприца вам будет необходимо самостоятельно открыть пробирку и заполнить ее кровью до нужного уровня.

Однако сделать это нужно СРАЗУ после взятия крови (не более 2-3 минут), до образования сгустков. В противном случае провести анализ будет невозможно.

Кровь заливать в пробирку следует по стенке пробирки, очень аккуратно, что бы избежать разрушения форменных элементов крови.

Крайне важно набирать в вакуумную пробирку столько крови сколько предусмотрено ее объемом . В пробирке содержится определенное количество реактива, которое рассчитано на определенное количество крови, поэтому чрезмерное или недостаточное заполнение пробирки кровью может влиять на качество анализа

Например если вы используете для взятия крови шприц, то при заполнении пробирки кровью можно ориентироваться на метки указанные на пробирке, а именно:

На данной пробирке указаны 2 метки – 250, 500 мкл. Соответственно рекомендуемый объем от 250 до 500 мкл. крови.

На данной пробирке тоже 2 метки одна указывает объем крови который компенсирует вакуум созданный пробирке, в данном случае 3,6 мл крови. А вторая метка указывает допустимый уровень крови.

Правильно взятая проба крови должна выглядеть так:

 

 

 

ДИАГНОСТИКА ИНФЕКЦИЙ МЕТОДОМ ПЦР
Материал: мазок из глотки, зева, носа, прямой кишки, влагалища, урогенитального тракта, раны, кожи или конъюнктивы в зависимости от места локализации возбудителя. Если имеется гнойное отделяемое, предварительно смыть его тампоном с физраствором
Тара: пробирка с прозрачной средой(ПЦР- пробирка).
Доп.требования: не принимать антибиотики в течение 1 месяца
Правила забора:
Мазок берется стерильным зондом, вращательными движениями, захватывая клетки эпителия. После этого конец зонда помещается в пробирку, прижимается крышкой и отламывается. До приезда курьера пробирка должна хранится в холодильнике при температуре 0...+4 градуса.
Кровь набирается в одноразовый шприц, кладется в холодильник до приезда курьера.
Моча отсылается в лабораторию в стерильном контейнере

БАКТЕРИОЛОГИЯ.
ДИСБАКТЕРИОЗ (ДИСБИОЗ) КИШЕЧНИКА, ПОДБОР ПРОБИОТИЧЕСКИХ ШТАММОВ

Материал: свежий кал
Тара: контейнер с ложкой или стерильная банка
Время доставки в день забора
Доп. требования: перед анализом не принимать антибиотики и пробиотики в течение 1 месяца.До приезда курьера кал хранить в холодильнике при температуре 0...+4 градуса.

 


БАК. ПОСЕВ НА МИКРОФЛОРУ


Материал: мазок на посев берется из носа, глотки, ротовой полости, прямой кишки, влагалища, и т.д. так же, как для ПЦР
Тара: длинные пробирки со средой (тупфер)
Доп. требования: перед анализом не принимать антибиотики в течение 1 месяца. На пробирке написать название клиники, кличку животного!
Правила забора: Место забора очищается от гноя ватным тампоном с физраствором. Мазок берется стерильным тупфером, вращательными движениями, захватывая клетки эпителия, помещается в длинную пробирку со средой. До приезда курьера хранить при комнатной температуре

ПОСЕВ НА МИКОПЛАЗМУ, УРЕАПЛАЗМУ
Материал:
Мазок с конъюнктивы, из влагалища, уретры
Тара: пробирка с желтоватой или зеленой средой и желтой наклейкой
Доп. требования: перед контрольным анализом не принимать антибиотики в течение 1 месяца
Правила забора: Место забора обрабатывается физраствором. Мазок берется стерильным зондом, вращательными движениями, захватывая клетки эпителия. После этого конец зонда помещается в пробирку, прижимается крышкой и отламывается. До приезда курьера пробирка должна храниться при комнатной температуре или в термостате при 37 градусах.

ПОСЕВ НА ХЛАМИДИИ
Материал: мазок из конъюктивы, влагалища, уретры
Тара: пробирка с розовой средой и оранжевой наклейкой
Доп.требования: перед контрольным анализом не принимать антибиотики в течение 1 месяца
Правила забора: см. Посев на микоплазму, уреаплазму.
Хранение материала: Важно! Пробирка с материалом для исследования на хламидии должна храниться в морозильнике, возможно повторное перезамораживание.

БАК. ПОСЕВ НАТИВНОГО МАТЕРИАЛА (МОЧИ, КРОВИ)
Материал:

Моча (взятая в количестве 3-5 мл в стерильную банку или одноразовый шприц).
Кровь, в количестве 1-3 мл в одноразовом шприце
Доп. требования: перед анализом не принимать антибиотики в течение 1 месяца. До приезда курьера материал хранить в холодильнике при температуре 0...+4 градуса. В лабораторию материал должен быть доставлен в тот же день. Разница между анализами на микоплазму, уреаплазму методами посева и ПЦР:

 

ПЦР

посев

сроки

1-3 дня

3-7 дней

чувствительность

реакция положительна при выявлении как живых, так и мертвых микроорганизмов

выявляет жизнеспособные
микроорганизмы

 

 


Алгоритм действий врача:
- Забор материала из места локализации патологического процесса, илитипичной локализации данного возбудителя (см.таблицу и памятку по забору)
- В направление вносится номер пробирки, отмечаются инфекции (любое количество ), на которые следует сделать ПЦР из данной пробирки
- Перед отправкой в лабораторию проверяется соответствие пробирок и направлений и правильность заполнения последних. В первый полиэтиленовый пакет помещаются все направления, во второй- все пробы с биоматериалом.
- Звонок по номеру +7(812) 385-00-55 заказ курьера (материал также может отвезти хозяин, особенно если анализ срочный)

Что к чему:

  1. ПЦР- маленькая пластиковая пробирка с 5-значным номером
  2. Бак. посев- транспортная система
  3. Гормоны- пробирка для крови с синей крышкой
  4. Серология- пробирка для крови с синей крышкой
  5. Дисбиоз- стерильная банка или контейнер

Сроки хранения:

  1. ПЦР- холодильник (от 1-5 дн.)
  2. Бак. посев- при комнатной температуре (1-2 дня)
  3. Гормоны- цельная кровь в холодильнике (1-2 дня), сыворотка (до месяца в морозилке)
  4. Серология-цельная кровь в холодильнике (1-2 дня), сыворотка (до месяца в морозилке)
  5. Дисбиоз- свежий кал (того же дня)

Отличия методов диагностики инфекционных заболеваний

Отличия методов диагностики инфекционных заболеваний

Бактериологические методы

Задачей бактериологических посевов является выделение чистой культуры микроорганизма с дальнейшей возможностью подбора антибиотикотерапии, пробиотических препаратов

Плюсы: высокая специфичность, возможность подобрать лекарственный препарат
Минусы: сложности в заборе и транспортировке биологического материала, длительность проведения анализа (5 -14 дн.)

Генно- молекулярный методы (ПЦР)

Задачей данной методики является точная идентификация микроорганизмов

Плюсы: 100% специфичность, высокие чувствительность и скорость исполнения, отсутствие специальных требований к транспортировке и хранению биологического материала, возможность генотипирования и полного определения генной последовательности микроорганизма
Минусы: нет возможности подбора лекарственных препаратов, необходимо заранее определить спектр определяемых возбудителей, тактика “что вырастет” не осуществима

Серологические методы

Задачей серологических методов является определение специфического иммунного ответа организма на возбудитель
Плюсы: по уровню определенных антител можно определить стадию заболевания и адекватность терапии, определить перенесенное в прошлом заболевание, оценить эффективности вакцинации.
Минусы: - В качестве биологического материала используется только кровь
- Низкая иммуногенность некоторых возбудителей не позволяет выявить антитела в крови даже при наличии заболевания, и, как следствие, возможен ложноотрицательный результат
- Ограниченный спектр идентифицируемых возбудителей

  1. Токсоплазмоз
  2. Хламидиоз
  3. Микоплазмоз
  4. Кандидоз
  5. Фасциолез
  6. Лептоспироз
  7. Парвовирус

 

Выявляемость инфекций в НИЛ “Диагностика” за 2007 год

  1. HV Simplex (1+2) - 18%
  2. Парвовирусный энтерит – 40%
  3. Панлейкопения кошек – 30%
  4. HV кошек – 10%
  5. Ротовирусный энтерит – 10%
  6. Калицивироз – 7%
  7. Коронавирус – 11%
  8. Лейкемия – 4%
  9. HV собак – 25%
  10. Инфекционный гепатит (аденовир-1) – 5%
  11. Инфекционный ларинготрахеит (аденовирус-2) – 15%
  12. Иммунодефицит кошек – 1%
  13. Микоплазмоз (Myc. hominis) – 40%
  14. Микоплазмоз (Myc. pneumonia) – 5%
  15. Микоплазмоз (Myc. genitalium) – 5%
  16. Уреаплазмоз – 9%
  17. Хламидиоз (Chlamidia trahomatis) – 6%
  18. Хламидиоз (Chlam. psitacci) – 10%
  19. Лямблиоз – 30%
  20. Бруцеллез – 10%
  21. Чума плотоядных – 10%
  22. Токсоплазмоз – 8%
  23. Кампилобактериоз – 8%
  24. Борелиоз – 5%
  25. Хеликобактер – 5%

Бактериология (251 пробы)

  1. Staphylococcus aureus -39%
  2. Staphylococcus epidermidis - 3.5%
  3. Staphylococcus saprophyticus -1.3 %
  4. E.coli -16.7 %
  5. Proteus -5.5%
  6. Pseudomonas - 8.7%
  7. Citrobacter -1.5%
  8. Enterobacter - 2%
  9. Streptococcus C - 2%
  10. Streptococcus G -32.1%
  11. Enterococci - 8.3%
  12. Klebsiella - 3.5%
  13. Neisseria - 2%
  14. Candida - 2.3%

Чувствительность к АБТ

  • Streptococcus С, Streptococcus G пенициллины
  • Staphylococcus aureus фаги 60%
  • Staphylococcus saprophyticus фторхинолоны
  • E.coli- 100% фагам
  • Pseudomonas- гентамицин (фаги-)